拟穴青蟹泛素基因的克隆及其在性腺发育过程中的表达
作者:
  • 戴燕彬1 1

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    1. 农业部东海海水健康养殖重点实验室, 集美大学水产学院, 福建 厦门 361021; 2. 福建省国家级大黄鱼原种场, 宁德市富发水产有限公司, 福建 宁德 352103; 3. 美国西东大学, 生物系, 新泽西州 07090
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作者单位:

1. 农业部东海海水健康养殖重点实验室, 集美大学水产学院, 福建 厦门 361021; 2. 福建省国家级大黄鱼原种场, 宁德市富发水产有限公司, 福建 宁德 352103; 3. 美国西东大学, 生物系, 新泽西州 07090

作者简介:

戴燕彬(1984), 女, 硕士研究生, 主要从事水产动物功能基因和基因组学研究.

中图分类号:

S968

基金项目:

国家自然科学基金资助项目(31072200); 福建省自然科学基金资助项目(2009J01179); 集美大学创新团队基金资助项目(2010A001).


Molecular characterization and expression profiles of Sp-Ub during gonad development in Scylla paramamosain 
Author:
Affiliation:

1. Key Laboratory of Healthy Mariculture in the East China Sea, Ministry of Agriculture, Fisheries College, Jimei University, Xiamen, 361021, China;

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    摘要:

    利用实时定量技术检测该基因在雌蟹各组织及性腺不同发育阶段中的表达情况。结果显示全长个氨基酸为高度保守的泛素结构域147预测的泛素结构域二级结构由由在鳃中的表达水平最高基因在各组织中的表达恒定有

    Abstract:

    isaneconomicallyimportantbreedingcrabfoundalongthesoutheastcoastofChina.Althoughextensiveresearchonreproductivephysiologyhasbeencarriedoutforthisspecies,descriptionoftheregulatorymechanismofthegonaddevelopmentatamolecularlevelislimited.Withinalltissues,themajorityofintracellularproteinsaredegradedbytheubiquitin(Ub)–proteasomepathway(UPP).Inthispathway,UbisconjugatedtoproteinsthataredestinedfordegradationbyanATP-dependentprocessthatinvolvesthreeenzymes.Todate,somestudieshavediscoveredthatcomponentsoftheubiquitinsystemmaybeinvolvedinvariousstepsandprocessesduringgametogenesis,modulationofsteroidreceptorconcentrations,placentaldevelopmentandendometrialmodificationatthebeginningofpregnancy.However,researchontheactionofUPPingonaddevelopmentincrabspeciesUbgene()wasidentifiedandcharacterizedusinganapproachwhichcombinestheexpressedsequencetag(EST)methodandrapidamplificationofcDNAend(RACE).Theexpressionprofileofinthevarioustissuesanddifferentdevelopingstagesofthegonadwasdeterminedbyreal-timequantitativePCR.ThefulllengthcDNAofthegeneisof555bp.Itencodesaproteinof154aminoacids,inwhichthe1-76aminoacidsfallwithintheubiquitindomain,andthe101147aminoacidsfallwithintheribosomal_S27adomain.ThesecondstructurepredictionrevealedthattheubiquitindomainoftheSp-Ubproteincontainsfiveextendedstrands,anα-helixandsomerandomcoils.Moreover,thethree-dimensionalstructurepredictedbytheSWISS-MODELshowedthatitcontainsanα-helixandfourβ-pleatedsheets.AlignmentoftheaminoacidsequenceswithindifferentUbproteinsindicatedthattheubiquitindomainandtheribosomal_S27adomainamongdifferentspeciesarehighlyconservedduring.Real-timequantitativePCRresultsshowedthatwasexpressedbytheubiquitindomaininalltissuesexamined(P>0.05)whichillustratedthattheUbgeneplaysawidevarietyofrolesinbiologicalprocesses.TheexpressionprofilesofinthedifferentdevelopingstagesoftheovaryrevealedthatitsexpressionlevelwasthehighestatstageO5followingstageO1,O4andO3.ItwasthelowestlevelatstageO2whichwassignificantlylowerthanstageO5(P<0.05).Withinthedevelopingstagesofthetestis,theexpressionlevelofwashigherinstageT2followingstageT1andT3,anditsexpressionlevelwassignificantlyhigherinstageT2comparedtostageT3(P<0.05).Duringgametogenesis,theoogoniaandspermatogoniumundergoactivemitosisproliferationforincreasingtheirnumberattheproliferationstage.Previousresearchshowedthatcyclin/Cdksworkcloselywiththeubiquitin-proteasomepathwayduringthemitoticcycle.Thus,itisreasonabletoobservethattheexpressionlevelofexpressionlevelatstageO2maybeduetotheinitiationofformationofprimaryoocytes,andinitialvitellogenesiswithalowlevelofproliferation.Moreover,theexpressionlevelofgraduallyincreasedastheyolkproteinswereaccumulatinginthegrowingoocytesduringvitellogenesis.Amassofproteinsneededtobesynthesizedanddegradedduringgametogenesis,andtheevidenceofubiquitin–conjugatedvitellinpolypeptidesininsectoocyteshadbeenreported.Theseresultsindicatedthatmaybeinvolvedinvitellogenesis.Furthermore,thetestisofcrabcontainsgermcellsofvariousdevelopmentstageswithintheseminiferoustubules.Hence,thehigherexpressionlevelofdevelopmentmaybenecessaryforfastincreasingthenumberofspermatocytecells,whichindicatedthatUPPwasmoreactiveinthesecells.Conclusively,ourstudiesarethefirstreportofcloningandexpressionprofilingofUbincrustaceans.AlloftheseresultscanprovidebasicdatashowingtheroleofSp-Ubwithinthegonaddevelopmentofthecrab.

    参考文献

    [1] 朱小明, 2006, 45(2): 256-260.

    [2] 叶海辉, 2006, 45(2): 170-175.

    [3] Jentsch S, Seufert W, Hauser H P. Genetic analysis of the ubiquitin system[J]. Biochem Biophys Acta, 1991, 1089(2): 127-139.

    [4] Goldstein G, Scheid M, Hammerling U, et al. Isolation of a polypeptide that has lymphocyte-differentiating properties and is probably represented universally in living cells[J]. Proc Natl Acad Sci, 1975, 72(1): 11-15.

    [5] 韩坤煌. Cyclin参与生殖调控及在甲壳动物性腺发育中的研究进展, 2010, (7): 48-54.

    [6] 金丰良, 2008, 51 (5): 473-479.

    [7] Hicke L, Dunn R. Regulation of membrane protein transport by ubiquitin and ubiquitin-binding proteins[J]. Annu Rev Cell Dev Biol, 2003, 19: 141-172.

    [8] Muratani M, Tansey W P. How the ubiquitin-proteasome system controls transcription[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2003, 4 (3): 192-201.

    [9] Ikeda F, Crosetto N, Dikic I. What Determines the Specificity and Outcomes of Ubiquitin Signaling?[J]. Cell, 2010, 143 (5): 677-681.

    [10] Wickliffe K, Williamson A, Jin L, et al. The multiple layers of Ubiquitin-dependent cell cycle control[J]. Chem Rev, 2009, 109 (4): 1537-1548.

    [11] Baarends W M, Roest H P, Grootegoed J A. The ubiquitin system in gametogenesis[J]. Mol Cell Endocrinol, 1999, 151 (1-2): 5-16.

    [12] Bebington C, Doherty F J, Fleming S D. The possible biological and reproductive functions of ubiquitin[J]. Hum Reprod Update, 2001, 7 (1): 102-111.

    [13] 贺伟华, 2008, 27 (3): 138-141.

    [14] Nath D, Shadan S. The ubiquitin system[J]. Nature, 2009, 458 (7237): 421.

    [15] Watson D C, Levy W B, Dixon G H. Free ubiquitin is a non-histone protein of trout testis chromatin[J]. Nature, 1978, 276 (5684): 196-198.

    [16] Agell N, Mezquita C. Cellular content of ubiquitin and formation of ubiquitin conjugates during chicken spermatogenesis[J]. Biochem J, 1988, 250 (3): 883.

    [17] Lanneau M, Loir M. An electrophoretic investigation of mammalian spermatid-specific nuclear proteins[J]. J Reprod Fertil, 1982, 65 (1): 163-170.

    [18] 李晓梅, 2009, (-66.

    [19] Islam M S, Kodama K, Kurokora H. Ovarian Development of the Mud Crab Scylla paramamosain in a Tropical Mangrove Swamps, Thailand[J]. J Sci Res, 2010, 2 (2): 380-

    389.

    [20] Zhang Z, Wu R S, Mok H O, et al. Isolation, characterization and expression analysis of a hypoxia-responsive glucose transporter gene from the grass carp, Ctenopharyngodon idellus[J]. Eur J Biochem, 2003, 270 (14): 3010-3017.

    [21] Zou Z, Zhang Z, Wang Y, et al. EST analysis on the gonad development related organs and microarray screen for differentially expressed genes in mature ovary and testis of Scylla paramamosain[J]. Comp Biochem Physiol Part D Genomics Proteomics, 2011, 6 (2): 150-157.

    [22] 王金昌, 2006, 24 (2): 155-158.

    [23] 张青峰, 2009, 26 (37): 12545-

    12546, 12571.

    [24] 黄新敏, 2010 (6): 191-194.

    [25] Laney J D, Hochstrasser M. Substrate targeting in the ubiquitin system[J]. Cell, 1999, 97 (4): 427-430.

    [26] 于晖, 2001 (S1): 32.

    [27] Wing S S, Jain P. Molecular cloning, expression and characterization of a ubiquitin conjugation enzyme (E2(17) kB) highly expressed in rat testis[J]. Biochem J, 1995, 305 (Pt 1): 125-132.

    [28] Zhang F, Chen L, Wu P, et al. cDNA cloning and expression of Ubc9 in the developing embryo and ovary of oriental river prawn, Macrobrachium nipponense[J]. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol, 2010, 155 (3): 288-293.

    [29] Shen B, Zhang Z, Wang Y, et al. Differential expression of ubiquitin-conjugating enzyme E2r in the developing ovary 

    and testis of penaeid shrimp Marsupenaeus japonicus[J]. Mol Biol Rep, 2009, 36 (5): 1149-1157.

    [30] 朱虎, 2002: 1-125.

    [31] Koepp DM, Harper JW, Elledge SJ. How the cyclin became a cyclin: regulated proteolysis in the cell cycle[J]. Cell, 1999, 97 (4): 431-434.

    [32] Tsukimura B. Crustacean vitellogenesis: its role in oocyte development[J]. Am Zool, 2001, 41 (3): 465-476.

    [33] Fang JJ, Qiu GF. Molecular cloning of cyclin B transcript with an unusually long 3untranslation region and its expression analysis during oogenesis in the Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis[J]. Mol Biol Rep, 2008, 36 (6): 1521-1529.

    [34] Subramoniam TMechanisms and control of vitellogenesis in crustaceans[J]. Fish Sci, 2011, 77: 1-21.

    [35] Abdu U, Yehezkel G, Sagi A. Oocyte development and polypeptide dynamics during ovarian maturation in the red- claw crayfish Cherax quadricarinatus[J]. Invertebr Reprod Dev, 2000, 37 (1): 75-83.

    [36] Giorgi F, Bradley J T, Nordin J H. Differential vitellin polypeptide processing in insect embryos[J]. Micron, 1999, 30 (6): 579-596.

    [37] Courtney S E, Rider C C, Stead A D. Changes in protein ubiquitination and the expression of ubiquitin-encoding transcripts in daylily petals during floral development and senescence[J]. Physiol Plant, 1994, 91 (2): 196-204.

    [38] 颜素芬, 1994, 33 (2): 231-236.

    [39] 上官步敏, 1991, 15 (2): 96-103.

    [40] 成永旭锯缘青蟹卵黄发生期卵母细胞和卵泡细胞之间的结构变化, 2002, 48 (1): 80-92.

    [41] 王艺磊, 1997, 43 (3): 249-254.

    [42] 叶海辉, 2002, 23 (2): 141-144.

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戴燕彬,韩坤煌,颜素芬,邹志华,张子平,王艺磊.拟穴青蟹泛素基因的克隆及其在性腺发育过程中的表达[J].中国水产科学,2012,19(6):946-955
DAI Yanbin, HAN Kunhuang, YAN Sufen, ZOU Zhihua, ZHANG Ziping, WANG Yilei. Molecular characterization and expression profiles of Sp-Ub during gonad development in Scylla paramamosain [J]. Journal of Fishery Sciences of China,2012,19(6):946-955

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  • 在线发布日期: 2012-11-08
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