2. 中国水产科学研究院 黄海水产研究所, 农业部海洋渔业可持续发展重点实验室, 青岛市海水鱼类种子工程与生物技术重点实验室, 山东 青岛 266071;
3. 青岛海洋科学与技术国家实验室, 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266071;
4. 乳山市水产技术推广站, 山东 乳山 264500
2. Yellow Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences; Key Laboratory of Sustainable Development of Marine Fisheries, Ministry of Agriculture; Qingdao Key Laboratory for Marine Fish Breeding and Biotechnology, Qingdao 266071, China;
3. Laboratory for Marine Biology and Biotechnology; Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266071, China;
4. Rushan Fisheries Technical Extension Station, Rushan 264500, China
红鳍东方鲀(Takifugu rubripes)群体主要分布于北太平洋西部的日本、朝鲜半岛和中国沿海[1], 因其具有很高的食用和经济价值, 在中国北方沿海地区及日本、韩国形成了一定养殖规模。野生红鳍东方鲀栖息在水深5~100 m之间海域, 底质为礁石或泥沙带, 昼沉夜浮。产卵场水深20 m左右[2], 在产卵期有由深海向近海洄游的习性, 并有一定的趋低盐度特性。在全人工繁育红鳍东方鲀时, 因其栖息环境中压力、底质、光线等因素的变化, 往往需要采取激素催产及人工辅助才能顺利排出成熟卵子。故而在红鳍东方鲀人工繁育中因不能及时人工挤卵, 常出现排卵延后、卵质下降现象, 导致受精率不足50%, 称为卵子过熟现象。生产经验表明, 红鳍东方鲀卵子排卵延迟后, 其外观形态会发生变化(颜色发黄, 卵径变小, 有残卵), 但并不明显, 需要凭生产经验做主观性判断, 且尚缺乏判断红鳍东方鲀卵子是否过熟的评判标准, 这给红鳍东方鲀繁育标准化带来一定难度。
卵子过熟在多种鱼类繁育中均存在, 玻璃梭鲈(Sander vitreus)鱼卵过熟后, 在胚胎孵化中更易出现畸形现象, 孵化率也显著降低[3]。卵子过熟后常表现为卵膜弹性下降, 卵子变脆, 胚胎畸形率升高的现象[4]。伴随着卵膜变薄甚至破损, 卵巢液与卵子内部也发生物质流动[5], 使卵内pH、氨基酸、蛋白水平及物质代谢受到重大影响[6]。已有研究表明, 鱼类卵子延迟排出后, 卵内酯化、非酯化脂肪酸含量也显著降低, 卵巢液pH下降, 受精、孵化率显著降低[5]。因磷酸酶定位于卵子内溶酶体和内膜系统[7], 苹果酸脱氢酶为三羧酸循环关键酶, 二者在代谢调节、能量转化及信号转导上均起着重要作用[8-9], 随着卵内环境波动, 二者亦不可避免受到影响。为此, 本研究从磷酸酶、苹果酸脱氢酶、脂肪酸组成等生化参数方面将红鳍东方鲀正常与过熟卵子进行对比, 并与其受精率统计数据进行回归分析, 以期为红鳍东方鲀过熟卵子鉴定及其苗种繁育规范化提供参数资料, 同时初步探究红鳍东方鲀延迟排卵对卵子内部生理生化的影响。
1 材料与方法 1.1 实验材料实验亲鱼于2014年1月底选自山东乳山市水产育苗场, 共选出体格健壮、无外伤、色泽好、活力强、腹部性腺轮廓明显的3龄雌鱼18尾, 雌鱼大小无明显差异[体重: (2.17±0.34) kg, 体长: (41.00±2.67) cm], 3龄雄鱼5尾, 置于催产池(6.0 m× 6.0 m×0.9 m), 水温18~20℃, 盐度30~31, 溶氧7 mg/L以上。
1.2 实验方法本研究所用卵子是在人工培育条件下获得的, 具体方案:红鳍东方鲀为一次性产卵鱼类, 经相同条件的人工培育和生殖调控, 使红鳍东方鲀亲鱼在同一时期发育成熟。采用注射LRH-A3250~ 300 μg/kg+HCG500 IU/kg对亲鱼统一催产, 24~48 h后, 检查性腺成熟情况, 并选取一尾精子活力强、精液量大的雄鱼做父本。随机选取6尾性腺完全成熟亲鱼立即人工授精, 记为A组; 另取6尾完全成熟亲鱼于培育池内继续培育1周后人工授精, 记为B组; 6尾完全成熟亲鱼于培育池内继续培育两周后人工授精, 记为C组。每尾雌鱼所产卵子均单独受精、孵化, 记为一个重复, 每组6个重复。授精前每条雌鱼取未受精卵各5 mL, 用蒸馏水冲洗干净, 滤纸吸干后于离心管内‒80℃保存。精子源自同一雄鱼冷冻精液, 精子活力达80%以上。受精10 min后洗净卵子, 布卵于直径为80 cm的60目筛绢锥形孵化网, 所有锥形孵化网置于同一40 m3大池中, 底部充气, 调节气流速度使受精卵在水中均匀分散涌起, 孵化温度18~19℃。
1.3 繁殖性状统计因鱼类卵子存在假受精现象, 未受精卵亦可自行发育至囊胚中期, 待胚胎发育至原肠前期时, 在显微镜下观察胚胎发育情况, 每组受精率重复统计3次, 每次统计200粒:
受精率/%=囊胚后期及原肠期胚胎数/总卵数× 100%
1.4 样品制备及分析 1.4.1 匀浆液制备取1 g左右卵子, 按照质量体积比1 : 9 (g/mL)加入预冷0.9%生理盐水, 冰水浴手工匀浆, 2500 r/min离心10 min, 制成10%匀浆上清液。
1.4.2 生化成分测定蛋白定量按照BCA法测定(试剂盒购于赛默飞世尔科技有限公司), 通过换算可基于干重的卵子蛋白含量(mg/g); 总氨基酸(AA)定量测定采用铜离子络合比色法(试剂盒购于南京建成生物工程研究所有限公司), 在一定波长下络合物颜色深浅与总氨基酸含量成正比, 通过换算得到1 g湿重卵内总氨基酸含量(mmol/g); 唾液酸(SA)定量测定采用5-甲基苯二酚络合比色法(试剂盒购于南京建成生物工程研究所有限公司), 通过测定络合物吸光度与标准即可计算出1 g湿重卵内唾液酸含量(mg/g); 酸性磷酸酶(ACP)和碱性磷酸酶(AKP)活力测定采用铁氰化钾比色法(试剂盒购于南京建成生物工程研究所有限公司), 定义在37℃每克组织蛋白与基质作用15 min产生1 mg酚为1个酶活力单位; 苹果酸脱氢酶(MDH)活力测定采用底物催化反应体系法(试剂盒购于南京建成生物工程研究所有限公司), 定义1 mg组织蛋白在本反应体系中1 min内催化1 μmol底物转变成产物定义为1个酶活力单位。
1.4.3 样品甲酯化取0.1 g冷冻干燥卵子, 加入1 mol/L KOH-甲醇溶液3 mL于80℃水浴20 min, 冷却后加入2 mol/L HCL-甲醇溶液3 mL, 80℃水浴20 min; 冷却后加正己烷1 mL, 振荡萃取, 静置分层, 取上清液样品于气相-质谱仪(GCMS- QP2010, 岛津, 日本)上机检测。
1.4.4 脂肪酸种类及含量分析气相条件:色谱柱: Rxi-1MS (30 m×0.25 mm, 0.25 μm)毛细管柱; 升温程序:初始温度150℃, 以15℃/min升至200℃, 再以2℃/min升至250℃; 进样口温度: 250℃; 载气(He)流量: 1 mL/min; 自动进样, 进样体积1 μL, 分流比: 20 : 1;溶剂切除时间: 2.5 min。质谱条件:电子轰击离子源, 离子源温度230℃, 接口温度280℃, 电子能量70 eV, 质量扫描范围45~500 m/z。
通过NIST08.LIB谱库进行检索, 确定脂肪酸组成(匹配度高于80%), 根据目标脂肪酸与内标峰面积比得出其在总脂中的相对含量。
1.5 数据处理用SPSS 17.0对所得数据进行单因素方差分析(one-way ANOVA)并进行Duncan多重比较、Pearson相关系数及简单回归方程分析, 以找到卵质生化参数与其质量相关性, 并确定几种可判定卵子受精率不低于50%的生化指标(为保证苗种繁育生产中的经济效益, 本研究将每尾亲鱼所产卵子受精率不低于50%作为衡量其有利用价值的标准, 即卵子未过熟)。数据以平均数±标准误差(x± SE)表示, P < 0.05为差异显著性水平, R2 > 0.400可判定为存在相关性。
2 结果与分析 2.1 不同组卵子受精率变化对18条亲鱼所产卵子受精率进行数据处理, A组卵子平均受精率为(86.66±1.82)%; 推迟1周产卵, 其受精率显著下降, 平均为(57.14±7.18)%; 推迟两周后, 其受精率降至(31.89±3.18)%。A、B、C3组间受精率差异显著(P < 0.05), 并呈下降趋势。
2.2 不同组卵内几种酶活力的变化由表 1可知, A、B、C这3组间ACP、MDH差异显著(P < 0.05); AKP在各处理间无显著性差异(P > 0.05); ACP在A组活力最高, 推迟1周后, 卵子内ACP活力显著下降(P < 0.05), 2周后, ACP活力降至最低; MDH在A组活力显著高于B、C两组(P < 0.05), B、C两组间未出现明显差异(P > 0.05); AKP活力在不同组间无显著性差异(P > 0.05)。
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表 1 不同处理组卵内酶活力及代谢物质的含量变化 Tab.1 The changes of enzyme activity and metabolites in eggs of Takifugu rubripes under different treatments |
由表 1可知, SA在各组间无显著性差异(P > 0.05)。AA含量在A组最高; 推迟1周后, AA含量无显著性变化(P > 0.05);推迟2周后, AA含量显著下降, 与A、B组相比表现出显著性变化(P < 0.05)。
2.4 不同组卵子脂肪酸种类及比例变化由表 2可知, A组中卵子内十四烷酸(C14:0)含量显著高于B、C两组(P < 0.05), 而B、C两组间无显著性变化(P > 0.05);十五烷酸(C15:0)含量在A组含量最高, C组含量最低, 呈显著性下降趋势(P < 0.05);棕榈酸(C16:0)表现出与C14:0相似的变化趋势; 棕榈油酸(C16:1n-7)在A、B两组含量相近, 无显著差异(P > 0.05), 而其在C组显著下降(P < 0.05);油酸(C18:1)含量在A、C组间差异显著(P < 0.05), B组与A、C处理组均无显著差异(P > 0.05); α-亚麻酸(C18:3n-3)与C16:1n-7变化趋势相似, 而二十二碳五烯酸(C22:5n-3)、总饱和脂肪酸(SFA)、二十碳五烯酸(EPA):花生四烯酸(ARA)均与C14:0变化趋势一致, 二十二碳六烯酸(DHA):二十碳五烯酸(EPA)在A、B两组间无显著差异(P > 0.05), 而其在C组含量却显著高于A、B两组(P < 0.05)。
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表 2 不同处理组卵子脂肪酸组成变化 Tab.2 The content changes of fatty acids in eggs of Takifugu rubripes under different treatments |
由表 3可知, 红鳍东方鲀卵子内ACP等多种生化参数与其受精率显著相关(P < 0.05), 其中ACP、MDH两种酶活力与其受精率均表现出显著线性正相关(P < 0.05, R12=0.705, R22=0.630), 却未发现AKP活力与受精率间存在相关性(P > 0.05, R2=0.214);卵子内AA含量与受精率呈显著正相关(P < 0.05, R2=0.706), 卵内SA含量与受精率间未发现明显相关性(P > 0.05, R2=0.010);对红鳍东方鲀卵子各脂肪酸含量与其受精率相关性分析显示, 饱和脂肪酸C14:0、C15:0、C16:0均与受精率呈显著线性相关(P < 0.05), 在高受精率卵子组内, 3种脂肪酸含量均呈现递增趋势; C16:1n-7、C18:3n-3、EPA这3种脂肪酸与受精率亦表现出线性正相关(P < 0.05), C22:5n-3与受精率呈显著负相关(P < 0.05);另统计可知, 红鳍东方鲀卵子内SFA含量也与受精率表现出显著正相关(P < 0.05, R2=0.725), DHA : EPA与受精率呈显著负相关(P < 0.05, R2= 0.604), 其比值随受精率的降低呈升高趋势, 但比值始终在3~4; EPA : ARA与受精率呈正相关, 但相关程度不高(P < 0.05, R2=0.390), 其比值范围在4~5波动。其余脂肪酸如硬脂酸(C18:0)、亚麻酸(C18:2n-6)、顺-11-二十烯酸(C20:1n-9)、ARA、二十碳四烯酸(C20:4n-3)、DHA等并未表现出与受精率存在相关性。
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表 3 各生化参数(x)与红鳍东方鲀卵子受精率(y)相关性 Tab.3 The correlation of biochemical parameters (x) and fertilization rates (y) of Takifugu rubripes eggs |
由表 4可知, 红鳍东方鲀卵子内ACP、MDH、AA及C14:0、C15:0、C16:0等7种脂肪酸等生化指标以及SFA、DHA:EPA脂肪酸统计参数均与各组的受精率表现出较好相关性(R2 > 0.400), 且在ACP活力范围不低于107.29 U/g(prot)时, 卵子受精率将可以在50%以上, 且随ACP活力的升高而升高, 相关系数R2=0.705; MDH活力范围在0.95~1.84 U/mg(prot)间时, 卵子受精率也可保持在50%以上, 受精率亦随着MDH活力的升高呈现升高趋势, 相关系数R2=0.630; AA在卵中含量在2.42~6.71 mmol/g间时, 受精率亦随之呈现递增趋势, 相关系数R2=0.706;受精率在50%以上时, 除C22:5n-3外, 脂肪酸中的C14:0、C15:0、C16:0等6种脂肪酸含量随受精率的增加而增加, 具体可见表 4; 另外SFA、DHA:EPA这两种脂肪酸统计参数在受精率不低于50%时也均有一定的取值范围, 具体范围及其增减性亦在表 5中列出。
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表 4 卵内酶活力、总氨基酸及脂肪酸等生化指标与受精率相关性 Tab.4 The correlation of enzyme activity, contents of amino acid and fatty acids in eggs of Takifugu rubripes with fertilization rates |
卵子过熟是影响鱼类卵子质量的重要因素之一[10-11], 卵子严重过熟后, 其会在外观形态方面发生变化, 比如卵黄呈半透明、胞浆及油球聚集于动物极、卵子吸水等现象[12-14]。研究表明, 卵子过熟后, 卵子内部生化成分亦会发生一定波动[5], 卵巢液中谷草转氨酶水平也出现明显升高[6]。虹鳟(Oncorhynchus mykiss)卵子过熟后, 卵子内部组织结构、水分、绒毛膜重量、钙离子水平、脂类以及蛋白水平均出现明显变化[15]; 大菱鲆(Sco phthalmus maximus)卵子过熟后, 卵子及卵巢液内蛋白水平、酶活力及pH均发生明显变化, 并与卵子活力存在相关性[16-17]; 多个研究表明, 虹鳟鱼卵巢液内蛋白水平的升高可作为判断其卵子过熟的指标[18-19], 其卵巢液内蛋白来源虽尚未有确切判断, 其很可能源自卵巢内卵子内部, 因卵子过熟后外膜出现破损, 卵内蛋白、氨基酸流入卵巢导致, 故此亦可佐证卵子内部生化成分可因卵子过熟而发生变化。
红鳍东方鲀卵子外观不透明, 卵膜较厚, 其发育过熟后从外观较难做出准确判断。本研究发现, 随亲鱼排卵期的人为推迟, 卵子内部多个生化参数出现明显变化。ACP定位于卵子内溶酶体和内膜系统[7], 在代谢调节、能量转化及信号转导上起重要作用, 同时作为溶酶体标志酶, 为卵子提供非特异性免疫保护[8], 红鳍东方鲀卵子在刚成熟时卵内ACP活力最高, 随着产卵期推迟, ACP活力呈现显著性下降。这表明在卵子成熟时, 卵膜处于完好状态, 卵内代谢处于健康水平, 膜系统的ACP活力最高; 排卵推迟后, 因卵子膜系统受损, 导致ACP活力下降, 此时卵内非特异性免疫作用显然也随之降低, 也给精子入卵后卵子正常分裂带来风险, 因而在刚成熟卵子处于最佳状态, ACP活力最高, 受精率也最好。MDH为三羧酸循环关键酶, 在卵子内部物质代谢、能量转化过程起着重要作用[9]。红鳍东方鲀卵子过熟后, 卵内MDH活力显著下降, 并与受精率呈现显著正相关, 无疑是和MDH在卵子代谢中的重要作用有关, 且因卵子外膜受损后卵巢液中偏碱性物质的进入, 卵内pH等内环境指标发生变化, 致使MDH活力降低。卵子内部氨基酸从卵膜外泄, 导致卵子氨基酸总量降低, 具体表现为随排卵期推迟, 卵内AA含量呈递减趋势。同时, AA作为卵内氨基酸代谢水平参考指标[9], 亦可知随排卵期推迟, 卵内氨基酸代谢水平下降, 进而影响卵子受精率, 具体表现为AA与受精率呈线性正相关。故而在红鳍东方鲀卵子过熟鉴定中, 卵子内ACP、MDH、AA生化参数具有一定的参考价值。
脂质为鱼类卵子内重要的储能物质, 徐善良等[20]研究结果表明, C14:0、C16:0等饱和脂肪酸在鱼类胚胎发育中作为重要能源首先被利用, 在鱼类胚胎发育中起着重要作用。红鳍东方鲀卵子过熟后, 或因卵膜破损、绒毛膜变薄, 使卵子内多种脂肪酸含量下降。本研究结果表明, C14:0、C15:0、C16:0三种饱和脂肪酸含量随产卵期推迟而显著下降, 使卵子内部重要的能源物质储量锐减, 显然这与受精率的降低不无关系。已有研究表明, C20:5n-3即EPA为类二十烷酸前体, 而类二十烷酸为具抗炎作用的物质[21], 在本研究结果中, C20:5n-3含量与卵子受精率成反比, 这可能因其含量的降低, 导致卵子内部抗炎作用的降低, 故而间接导致了卵子受精率的下降。Shearer等[22]研究结果表明, ARA为具促炎作用的类二十烷酸前体, 其与EPA代谢过程中所需酶相同, 二者代谢过程将不可避免发生竞争, 并决定着卵子的抗感染能力, 故而本研究结果中也出现EPA与ARA比值与卵子受精率呈现正相关的现象, 这与其在大菱鲆[23]和暗纹东方鲀(Takifugu obscurus)[24]中的表现相一致。本研究结果发现, DHA与EPA比值与卵子受精率呈负相关, 但在大西洋鲷(Sparus aurata)[25]中, 却发现DHA与EPA比值与其卵子活力呈正相关, 因此卵子内部脂肪酸在不同鱼类胚胎发育中所起作用的差异及其在胚胎发育中是否具有不同的参与机制, 还需进一步研究。
在红鳍东方鲀工厂化育苗中, 常因人为因素而出现雌性亲鱼产卵期延迟现象, 这导致卵子的受精率波动很大, 生产经验表明, 亲鱼产卵期延迟两周以上时, 排出卵子因夹杂较多已碎卵壳而较容易区分, 但当产卵期延迟时间较短时, 卵子外观并无明显特征, 但所得卵子受精率往往不足50%, 这给红鳍东方鲀育苗行业规范化及卵子质量标准化带来一定难度。
本研究结果表明, 在红鳍东方鲀人工授精时, 在亲鱼卵子成熟后1周内进行人工挤卵尤为重要; 在本次红鳍东方鲀卵子过熟性评价中, 当卵子中酸性磷酸酶活力在107.29~170.50 U/g(prot)范围, 苹果酸脱氢酶活力在0.95~1.84 U/mg(prot)范围, 总氨基酸在卵中含量在2.42~6.71 mmol/g范围时, 及C14:0在100 g总脂中的含量在0.98~1.85 g范围, C15:0在0.39~0.52 g范围, C16:0在20.93~22.38 g范围, C16:1n-7在7.36~8.63 g范围, EPA在6.18~6.96 g范围, C22: 5n-3在3.26~3.97 g范围, 总饱和脂肪酸(SFA)在28.45~30.11 g范围, DHA:EPA比值在3.20~3.73范围内时, 均可作为红鳍东方鲀卵子可受精率高于50%的参考指标, 据此可在一定程度反映红鳍东方鲀繁育过程中卵子的可利用价值, 以及生产上可对过熟卵子进行剔除, 以提高苗企生产效率。不同龄或不同群体或不同批次成熟的亲鱼所产的正常卵子内的生化参数是否均在相同的范围内波动, 卵子延迟排出时, 卵子内AKP、SA的生理作用有无重大变化, 同样作为膜结合蛋白[26], AKP却为何未能呈现与ACP类似的变化趋势, 现在尚不得知, 因此为建立红鳍东方鲀的卵质生化参数标准, 目前还有很多工作要做, 且在卵子过熟期间卵子内部发生变化的机制尚未清晰, 未来还需深入研究。
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